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免疫球蛋白提取 (Immunoglobulin isolation):蛋白定量技術(shù)

放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-06-27

(一)雙縮脲測定法

1.原理 蛋白質(zhì)中的肽鍵有雙縮脲反應(yīng),在堿性溶液中與二價(jià)銅離子形成藍(lán)紫色的絡(luò)合物,在一定的范圍內(nèi),顏色的深淺與蛋白質(zhì)的含量成正比。此法特異性強(qiáng),游離的氨基酸、小肽和核酸均不產(chǎn)生這種反應(yīng),但此法不夠敏感,僅能測出毫克水平。

2.試劑配制

硫酸銅(CuSO4·5H2O 1.50g

酒石酸鉀鈉 5.00g

H2O 500.0ml

10%氫氧化鈉(不含硫酸鈉) 300ml

H2O 加至 1 000ml

此溶液可長期保存,如產(chǎn)生暗紅色沉淀,則應(yīng)廢棄重配。

3.標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備

準(zhǔn)確稱取牛血清白蛋白1.0g(必要時(shí)須首先采用凱氏定氮法測定牛血清白蛋白制品中實(shí)際純蛋白含量,然后換算),以生理鹽水配成1%的濃度。

1%的牛血清白蛋白按表進(jìn)行稀釋:

表 牛血清白蛋白稀釋方法表

號(hào)

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

1%蛋白液(ml

1.0

.09

0.8

0.7

0.6

0.5

0.4

0.3

0.2

0.1

蛋白含量(mg

10

9

8

7

6

5

4

3

2

1

生理鹽水(ml

0.5

0.6

0.7

0.8

0.9

1.0

1.1

1.2

1.3

1.4

1.5

雙縮脲試劑(ml

4.0

4.0

4.0

4.0

4.0

4.0

4.0

4.0

4.0

4.0

4.0

試劑蛋白含量(mg

8.0

7.2

6.4

5.6

4.8

4.0

3.2

2.4

1.6

0.8

0

注:1%牛血清白蛋白,經(jīng)凱氏定氮測定含純蛋白為80%。

混勻后于室溫放置0.5h1h,光電比色(540nm),順序由低濃度至高濃度,每管測3次,求其平均值。

OD值為縱坐標(biāo),蛋白含量為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

4.樣品測定

取樣品0.1ml,加生理鹽水1.4ml。也可將樣品做110稀釋加1ml,再加生理鹽水0.5ml

加雙縮脲試劑4.0ml,混勻,至室溫0.5h1h。

另以1.5ml生理鹽水加4.0ml雙縮脲試劑作為空白對(duì)照。

OD540值。

根據(jù)OD值從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出蛋白含量。

注意:各種雙縮脲試劑的配法、加量及室溫靜置時(shí)間均有差異,一旦標(biāo)準(zhǔn)曲線制定后,樣品的測定則必須與標(biāo)準(zhǔn)曲線制定的條件一致,否則結(jié)果有差異。

(二)紫外光譜吸收法

1.原理 本法根據(jù)蛋白之中的芳香族氨基酸-色氨酸、酪氨酸在紫外光區(qū)的吸收特點(diǎn)而建立的。蛋白質(zhì)在280nm波長附近有一吸收峰,其吸收程度與這些氨基酸的含量成正比。此法靈敏度高,可測到微克水平,操作簡單,不需要加各種試劑,測完后,樣品可回收。

2.標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備

用精密天平稱取牛血清白蛋白50mg,溶于50ml生理鹽水中。

以生理鹽水再稀釋成每ml0.1mg0.2mg、0.3mg、0.4mg……0.9mg,以鹽水對(duì)照。

測各管OD280值。

OD280值為縱坐標(biāo),蛋白含量為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

3.樣品測定

將待測樣品以鹽水適當(dāng)稀釋,在0.10mg/ml~1.00mg/ml之間,以生理鹽水為對(duì)照,測OD280值,從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出蛋白含量。

(三)Folin酚法

1.原理 蛋白質(zhì)中的酪氨酸與色氨酸和Folin酚試劑中的磷鎢酸、磷鉬酸作用后,在堿性條件下不穩(wěn)定,被還原成藍(lán)色的化合物(鉬藍(lán))。因此通過比色即可測知標(biāo)本中的蛋白含量。該法的優(yōu)點(diǎn)是操作簡單、靈敏度高,且不受溶液中脂多糖的干擾。

2.試劑

試劑甲:

A液:Na2CO3 10.00g

NaOH 2.00g

酒石酸鉀鈉(或鉀鹽鈉鹽)0.25g

混合、溶于500ml蒸餾水中。

B液:CuSO4·5H2O 0.5g

H2O 100.00ml

用前將A50份與B1份混合即為試劑甲。

試劑乙:

于磨口回流瓶加入下列試劑

Na2WO4·2H2O 100.00g

NaMoO4·2H2O 25.00g

H2O 700.00ml

85H3PO4 50.00ml

HCl 100.00ml

按上回流冷凝管以小火回流10h后再加:

硫酸鋰 150.00g

H2O 50.00ml

溴水 數(shù)滴

開口繼續(xù)沸騰15min,驅(qū)除過量的溴,冷卻后溶液呈黃色微帶綠色(如仍呈綠色,須重復(fù)滴加液體溴步驟)。稀釋至1L,過濾,濾液置于棕色瓶保存。使用時(shí)用標(biāo)準(zhǔn)NaOH液滴定,以酚酞為指示劑,然后適當(dāng)稀釋(加水約1倍)使最終濃度為1mol/L。

3.標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備

取標(biāo)準(zhǔn)牛血清白蛋白2.50mg,溶于10ml蒸餾水中,使成250μg/ml。

按表稀釋。

表 標(biāo)準(zhǔn)曲線稀釋方法

成分

號(hào)

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)品(ml

0

0.2

0.2

0.4

0.1

0.6

0.6

0.8

0.8

1.0

1.0

生理鹽水(ml

1.0

0.8

0.8

0.6

0.6

0.4

0.4

0.2

0.2

0

0

蛋白含量(μgml)

0

50

50

100

100

150

150

200

200

250

250

每管加試劑甲5ml,混合后室溫放置10min,再加0.50ml試劑乙(即Folin酚試劑),立即搖勻(否則顯色降低)。

30min后測OD650nm

OD為縱坐標(biāo),蛋白含量為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

4.樣品測定

待測樣品1ml(適當(dāng)稀釋至約含25μg250μg/ml)。

加試劑甲、乙。

比色、測OD650值。

查標(biāo)準(zhǔn)曲線,求蛋白含量乘以稀釋倍數(shù),即為樣品的蛋白含量。

(四)紫外分光測定法

A1%1cm13.8IgG(280nm)

A1%1cm14.5(IgM)(280nm)

蛋白質(zhì)濃度(mg/ml=1.45OD2800.74OD260 (此為經(jīng)驗(yàn)公式,即以不同濃度的蛋白質(zhì)和核酸混合測定的數(shù)值所建立的)。

 

 

 

 
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