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流式細(xì)胞儀使用方法

放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2011-07-06  來(lái)源:儀器信息網(wǎng)
核心提示:流式細(xì)胞儀使用方法
 
 
  一.開(kāi)機(jī)程序

  1.檢查穩(wěn)壓器電源,打開(kāi)電源,穩(wěn)定5分鐘。
  2.打開(kāi)儲(chǔ)液箱,倒掉廢液, 
  并在廢液桶中加入400ml漂白水原液。打開(kāi)壓力閥,取出鞘液桶,將鞘液桶加至4/5滿(mǎn)(一般可用三蒸水,做分選必須用PBS或FACSFlow),合上壓力閥。確實(shí)蓋緊桶蓋,檢查所有管路是否妥善安置。
  3.將FACSCalibur開(kāi)關(guān)打開(kāi),此時(shí)儀器功能控制鈕的顯示應(yīng)是STANDBY,預(yù)熱5-10分鐘。排出過(guò)濾器內(nèi)的氣泡。
  4.如果需要打印,打開(kāi)打印機(jī)電源。
  5.打開(kāi)電腦,等待屏幕顯示出標(biāo)準(zhǔn)的蘋(píng)果標(biāo)志。
  6.執(zhí)行儀器PRIME功能一次,以排除Flow cell中的氣泡。
  7.分析樣品時(shí),先用FACAFlow 或PBS進(jìn)行HIGH RUN約2分鐘。
做過(guò)分選后,每次開(kāi)機(jī)后需沖洗管道:向分選裝置上裝上兩個(gè)50ml離心管,不接通濃縮系統(tǒng),摁下右下角白色按鈕開(kāi)始沖洗。待自動(dòng)停止
后接通濃縮裝置,同上法沖洗一次。
 
二.預(yù)設(shè)獲取模式文件(Acquisition Template Files)

  1.從蘋(píng)果標(biāo)志中選擇CELLQuest見(jiàn)一個(gè)新視窗,可利用此視窗編輯一個(gè)獲取模式文件。
  2.選取屏幕左列繪圖工具中的Dot plot,繪出一個(gè)或多個(gè)Dot Plots(點(diǎn)圖)。從Dot Plot對(duì)話(huà)框中選取Acquisition作為圖形資料來(lái)源,并確定適當(dāng)?shù)膞軸和y軸參數(shù)。
  3.選取屏幕左列繪圖工具中的Histogram,同上法可繪出Histogram(直方圖)。
  4.將此視窗命名后儲(chǔ)存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest Folder \EXP文件夾中,下次進(jìn)行相同實(shí)驗(yàn)時(shí)可直接調(diào)用。
本計(jì)算機(jī)中已設(shè)定兩個(gè)模式文件:ACQ和EXP,儲(chǔ)存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest  \EXP文件夾中,ACQ用于細(xì)胞DNA檢測(cè),EXP用于細(xì)胞表面標(biāo)志分析。
 
 三.用CELLQuest進(jìn)行儀器的設(shè)定和調(diào)整

  1.從蘋(píng)果畫(huà)面中選取CELLQuest,進(jìn)入CELLQuest后在File指令欄中打開(kāi)合適的獲取模式文件。
  2.從屏幕上方Acquire指令欄中,選取Connect to Cytometer(快捷鍵: +B)進(jìn)行電腦和儀器的連機(jī)。將出現(xiàn)的Acquisiton  Control對(duì)話(huà)框移至合適位置。
  3.從Cytometer指令欄中,開(kāi)啟Detectors/Amps、Threshold、Compensation、Status等四個(gè)對(duì)話(huà)框,并將它們移至屏幕右方,以便獲取數(shù)據(jù)時(shí)隨時(shí)調(diào)整獲取條件。也可以用 +1,2,3,4獲得此四個(gè)對(duì)話(huà)框。
  4.在Detectors/Amps對(duì)話(huà)框中,先為每個(gè)參數(shù)選擇適當(dāng)?shù)谋对瞿J?amplifier mode):線性模式Lin或?qū)?shù)模式Log。一般進(jìn)行細(xì)胞表面抗原分析如分析外周血的淋巴細(xì)胞亞群時(shí),F(xiàn)SC和SSC多以線性模式Lin測(cè)量,且DDM Param選擇FL2,而FL1,  FL2與FL3則以對(duì)數(shù)模式Log測(cè)量;分析細(xì)胞DNA含量時(shí),F(xiàn)SC,SSC,F(xiàn)L1,F(xiàn)L2,F(xiàn)L3皆以Lin進(jìn)行測(cè)量,且DDM Param選擇FL2;分析血小板表型時(shí),F(xiàn)SC,SSC,F(xiàn)L1,F(xiàn)L2,F(xiàn)L3等均以Log進(jìn)行測(cè)量。
  5.放上待檢測(cè)的樣品,將流式細(xì)胞儀設(shè)定于RUN,流速可在HIGH 或LOW上。
  6.在Acquisiton 
  Control對(duì)話(huà)框中,選取Acquire,開(kāi)始獲取細(xì)胞。在以下的儀器調(diào)整過(guò)程中隨時(shí)選取Pause,Restart以觀察調(diào)整效果。未完全調(diào)整好之前不要去掉SETUP前的“”。
  7.在Detectors/Amps對(duì)話(huà)框中,調(diào)整FSC和SSC探測(cè)器中的信號(hào)倍增度:PMT voltages(粗調(diào))與Amp Gains(細(xì)調(diào)),使樣品信號(hào)出現(xiàn)在FSC-SSC點(diǎn)圖內(nèi),且三群細(xì)胞合理分布。
  8.在Threshold 
  對(duì)話(huà)框中選擇適當(dāng)?shù)膮?shù)設(shè)定Threshold,并調(diào)整Threshold的高低,以減少噪音信號(hào)(細(xì)胞碎片)。一般做細(xì)胞表型時(shí)用FSC-H而做DNA時(shí)用FL2-H。Threshold并不影響檢測(cè)器對(duì)信號(hào)的獲取,但可改善畫(huà)面質(zhì)量。
  9.從屏幕左列繪圖工具中選取Region(區(qū)域),并在靶細(xì)胞周?chē)O(shè)定區(qū)域線,即通常所說(shuō)的門(mén)。圈定合適的細(xì)胞群可使儀器調(diào)整更為容易。
  10.Detectors/Amps對(duì)話(huà)框中,調(diào)整熒光檢測(cè)器(FL1, FL2, FL3, FL4等)的倍增程度。根據(jù)所用的熒光陰性對(duì)照樣品調(diào)整細(xì)胞群,使之分布在正確的區(qū)域內(nèi)。
  11.在Compensation對(duì)話(huà)框中,根據(jù)所用的調(diào)補(bǔ)償用標(biāo)準(zhǔn)熒光樣品調(diào)整雙色(或多色)熒光染色所需的熒光補(bǔ)償。比如應(yīng)該為FL1+ FL2- 
  的細(xì)胞群卻分布在FL1+ FL2+區(qū)域內(nèi),則需調(diào)大FL2-?%FL1中的“?”,并從FL1-FL2點(diǎn)圖中觀察新的調(diào)整是否恰當(dāng)
  12.在Status對(duì)話(huà)框中可見(jiàn):Laser Power:正常值—Run/Ready為14.7mW,Standby為5mW;Laser current:正常值為6Amps左右。
  13.調(diào)整好的儀器設(shè)定可在Instrument Settings對(duì)話(huà)框中儲(chǔ)存,下次進(jìn)行相同實(shí)驗(yàn)時(shí)可調(diào)出使用,屆時(shí)只需微調(diào)即可。
 本計(jì)算機(jī)中已有三個(gè)名叫儲(chǔ)存于FACStation G3 \BD Applications \CELLQuest Folder\IMM-InstrSettings及FACStation G3 \BD Files \Instrument Settings Files\CalibFile和Mast-Cell-Set的參數(shù)文件,前二者可用于分析人白細(xì)胞,后者用于分析小鼠肥大細(xì)胞。
 
  四.通過(guò)預(yù)設(shè)的獲取模式文件進(jìn)行樣品分析
 
  1.從蘋(píng)果標(biāo)志中選擇CELLQUEST,新視窗出現(xiàn)后從File指令欄中選擇Open,打開(kāi)預(yù)設(shè)的獲取模式文件。
  2.從屏幕上方Acquire指令欄中,選取Connect to Cytometer進(jìn)行電腦和儀器的連機(jī)。將出現(xiàn)的Acquisiton 
  Control對(duì)話(huà)框移至合適位置。
  3.從Cytometer指令欄中選取Instrument Settings,在其對(duì)話(huà)框中選擇Open以調(diào)出以前存儲(chǔ)的相同實(shí)驗(yàn)的儀器設(shè)定,按Set 確定。
  4.在Acquire指令欄中,選擇Acquisition&Storage決定儲(chǔ)存的細(xì)胞數(shù),參數(shù),信號(hào)道數(shù)。其中Resolution在做細(xì)胞表面標(biāo)志時(shí)選擇256,做DNA時(shí)選擇1024。Parameter 
  Saved…則根據(jù)不同的檢測(cè)對(duì)象選擇不同的參數(shù)。
  5.在Acquire指令欄中,選擇Parameter 
  Description,以決定文件存儲(chǔ)位置(folder),文件名稱(chēng)(file),樣品代號(hào)以及各種參數(shù)的標(biāo)記(panel),即安排tube1,2,3…的檢測(cè)參數(shù)。一般本儀器獲取的數(shù)據(jù)按照檢測(cè)對(duì)象的不同分別儲(chǔ)存于FACStation 
  G3\BD Applications \CELLQuest \IMM 和DNA 文件夾中。文件根據(jù)日期命名。
  6.在Cytometer指令欄中,選擇Counters,將此對(duì)話(huà)框移至合適位置,以便于隨時(shí)觀察events計(jì)數(shù)。
  7.將樣品試管放至檢測(cè)區(qū),在Acquire Control對(duì)話(huà)框中選取Acquire以啟動(dòng)樣品分析測(cè)定。
  8.微調(diào)儀器設(shè)定,待細(xì)胞群分布合適后選擇Acquire Control對(duì)話(huà)框中Pause, Abort, 
  去除Setup前的“”,開(kāi)始正式獲取信號(hào),存儲(chǔ)數(shù)據(jù)。
  9.當(dāng)一定數(shù)目的細(xì)胞被測(cè)定后,獲取會(huì)自動(dòng)停止,并會(huì)自動(dòng)存儲(chǔ)數(shù)據(jù)。重復(fù)步驟7,繼續(xù)分析下一個(gè)樣品,直到所有的樣品數(shù)據(jù)分析完畢。
  當(dāng)所有樣品分析分析完畢,即換上三蒸水,并將流式細(xì)胞儀置于“STANDBY”狀態(tài),以保護(hù)激光管。
 
  五.關(guān)機(jī)程序:
 
  1.從File中選擇Quit, 退出軟件,選擇Don’t Save至蘋(píng)果屏幕。
  2.用4ml 1:10稀釋的漂白水作樣品,將樣品置于旁位(vacuum is on),以外管吸去約2ml,在將樣品架置于中位(vacuum is 
  off),再HIGH RUN 5分鐘(內(nèi)管吸去2ml)。
  3.改用三蒸水4ml作樣品,同上處理。
  4.按Prime三次。
  5.此時(shí)儀器自動(dòng)轉(zhuǎn)為STANDBY狀態(tài),換2ml三蒸水。必須在儀器處于“STANDBY”狀態(tài) 
  10分鐘后再依次關(guān)掉計(jì)算機(jī)、打印機(jī)、主機(jī)、穩(wěn)壓電源,以延長(zhǎng)激光管壽命,并確保應(yīng)用軟件的正常運(yùn)行。
  6.填寫(xiě)使用登記表。
 
編輯:songjiajie2010

 
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